Véronique Moulin, Ph.D.

VMoulin    

Professeure-chercheure

Tél: 418 649 0252 poste 61715

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La cicatrisation cutanée est un processus complexe qui, lorsque pris en défaut, peut entrainer une morbidité et une mortalité importantes. Mes travaux de recherche visent à approfondir nos connaissances relatives aux mécanismes de la cicatrisation normale et pathologique de la peau. Pour ce faire, j’utilise différents modèles de culture cellulaire par génie tissulaire permettant de reproduire in vitro les pathologies fibrotiques de la peau (cicatrices hypertrophiques, sclérodermie). Je fais également appel à des modèles animaux afin de compléter mes recherches.
Thèmes de recherche

1- Les myofibroblastes dans les cicatrices normales ou pathologiques

Ces cellules apparaissent lors de la cicatrisation des plaies et ont un rôle important dans la contraction des bords de la plaie. Nous avons montré que ces cellules ont également un rôle central dans la production de la matrice extracellulaire ainsi que dans l’angiogénèse. Elles ont un rôle dans la formation de cicatrices invalidantes comme les cicatrices hypertrophiques.

a) Analyse des différentes fonctions des myofibroblastes dans la cicatrisation normale ou  pathologique;

b) Étude des interactions existantes entre les différents types cellulaires de la peau (cellules endothéliales, kératinocytes, fibroblastes et myofibroblastes)- rôle de différentes cytokines dans ces interactions; évaluation du rôle des microparticules dans les interactions cellulaires;

c) Rôle de la matrice extracellulaire sécrétée par les cellules dans les différentes fonctions cellulaires comme l’apoptose, l’angiogénèse ou la différenciation cellulaire.

3- Étude de la sclérodermie systèmique

Cette pathologie est une maladie fibrosante qui rigidifie l’ensemble des organes dont la peau et qui est mortelle à long terme.

a) Utilisation du génie tissulaire pour comprendre cette pathologie dans la peau;

b) Rôle de l’apoptose dans la sélection de certaines cellules au cours du développement de la fibrose.

4- Action des champs électriques épidermiques sur la cicatrisation

5- Application clinique du génie tissulaire dans un contexte de cicatrisation pathologique

Pour atteindre cet objectif, j’utilise différentes techniques de biologie cellulaire et de génie tissulaire assorties à des analyses biochimiques, histologiques et moléculaires. La compréhension de ces mécanismes a pour but de déterminer de nouveaux traitements afin d’intervenir de façon préventive ou curative dans la formation des cicatrices hypertrophiques et dans la sclérodermie.

Techniques utilisées

  • Biologie cellulaire appliquée au secteur de pointe en génie tissulaire;
  • Culture de cellules humaines primaires en monocouche;
  • Production et analyse de tissus reconstruits;
  • Histologie et analyse de tissus/cellules par immunohistochimie;
  • Analyses biochimiques (cytométrie en flux, Western blot, électrophorèse en deux dimensions, ELISA, etc.);
  • Biologie moléculaire (transduction virale, qRT-PCR, etc.).

Opportunités de formation

Nous sommes présentement à la recherche d’étudiants motivés et dynamiques intéressés à joindre notre équipe pour effectuer des études graduées de 2ème ou de 3ème cycle ou pour effectuer un stage post-doctoral.

Envoyez les documents suivants par courriel à This email address is being protected from spambots. You need JavaScript enabled to view it.:

  • Lettre de motivation
  • Curriculum Vitae
  • Relevé de notes

Équipe

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Sébastien Larochelle, M.Sc.

Assistant de recherche

 

 

 

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Jadson Moreira Pereira, M.D., M.Sc.

Étudiant au doctorat

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Mays Merjaneh

Étudiante à la maîtrise

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Alexandra Laberge

Étudiante à la maîtrise

   

Véronique Moulin

Publications récentes

Beaudoin-Cloutier C, Guignard R, Bernard G, Gauvin R, Lavoie A, Lacroix D, Moulin VJ, Germain L, Auger FA. “Production of a bilayered self-assembled skin substitute using a tissue-engineered decellularized dermal matrix” Tissue engineering, part C: methods, accepté.

Morissette Martin P, Maux A, Laterreur V, Mayrand D, Gagné VL, Moulin VJ, Fradette J “Enhancing repair of full-thickness excisional wounds: impact of tissue-engineered biological dressings featuring human differentiated adipocytes“Acta Biomaterialia, 22: 39-49, 2015.

Ayoub A, Moreira-Pereira J, Rioux LE, Turgeon SL, Beaulieu M, Moulin VJ, “Role of seaweed laminaran polysaccharide from S. Longicruris on matrix deposition during dermis production using tissue-engineering method” International Journal of biological macromolecule, 75 :13-20, 2015.

Gibot L, Chabaud S, Bouhout S, Bolduc S, Auger FA, Moulin VJ. “Anticancer properties of chitosan on human melanoma are cell line dependent”, International Journal of biological macromolecule, 72: 370-379, 2015.

Boa O, Beaudoin Cloutier C, Genest H, Labbé R, Rodrigue B, Soucy J, Roy M, Arsenault F, Ospina CE, Dubé  N, Rochon MH, Larouche D, Moulin VJ, Germain L, Auger FA: “Prospective study on the treatment of lower extremity chronic venous and mixed ulcers using tissue-engineered skin substitute made by the self-assembly approach”, Advances in skin and wound care, 26 : 400-409, 2013.

Mayrand D, Laforce-Lavoie A, Larochelle S, Genest H, Roy M, Moulin VJ: “Angiogenic properties of myofibroblasts isolated from normal human skin wounds” Angiogenesis, 15:199-212, 2012.

Simon F, Bergeron D, Lopez-Vallé CA, Genest H, Armour A, Moulin VJ : « Enhanced secretion of TIMP-1 by hypertrophic scar keratinocytes could contribute to the fibrosis » Burns, 38 :421-427, 2012.

Dubé J, Rochette O, Goulet D, Bourdages M, Plante M, Roberge C, Lévesque P, Gauvin R, Moulin VJ*, Germain L*: “Direct current stimulation increases calcium in human keratinocytes with a low differentiated state” *co-auteurs senior et de correspondance, Journal of Cellular Physiology, 227:2660-2667, 2012.

Chabaud S, Moulin VJ. “Apoptosis modulation as a promising target for treatment of systemic sclerosis” International Journal of Rheumatology, Vol 2011: 495792, Epub 2011 Sep 6.

Chabaud S, Corriveau MP, Grodzicky T, Senécal JL, Chartier S, Moulin VJ : Decreased secretion of MMP by non-lesional late-stage scleroderma fibroblasts after selection via activation of the apoptotic Fas-pathway, Journal of Cellular Physiology, 226 : 1907-1914, 2011.

Robayo LM, Moulin VJ, Tremblay P, Cloutier R, Lamontagne J, Larkin AM, Chabaud S, Simon F, Islam N, Goulet F.: New human ligament healing model in vitro, Wound Repair and Regeneration, 19(1):38-48, 2011.

Moulin VJ, Mayrand D, Messier H, Martinez C, Lopez-Vallé CA, Genest H: Shedding of microparticles by myofibroblasts as médiator of cellular cross-talk during normal wound healing, Journal of Cellular Physiology, 225 : 734-740, 2010.

Dubé J, Rochette O, Lévesque P, Gauvin R, Roberge C, Auger FA, Goulet D, Bourdages M, Plante M, Germain L, Moulin VJ: “Restoration of the transepithelial potential during the wound healing process in vivo and on a tissue engineered human skin” Tissue Engineering, 16 (10): 3055-3063, 2010.

Corriveau MP, Boufaied I, Lessard J, Chabaud S, Sénécal JL, Grodzicky T, Chartier S, Raymond Y, Moulin V : The fibrotic phenotype of systemic sclerosis fibroblasts varies with disease duration and severity of skin involvement : reconstitution of skin fibrosis development using a tissue engineering  approach, Journal of Pathology; 217 :534-542, 2009.

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